Home Immunology & Inflammation ROS activator Disodium (R)-2-Hydroxyglutarate

연구용

Disodium (R)-2-Hydroxyglutarate ROS activator

제품 번호: S7873

Disodium (R)-2-Hydroxyglutarate (D-α-Hydroxyglutaric acid disodium) is a competitive inhibitor of α-ketoglutarate-dependent dioxygenases with Ki of 10.87 ± 1.85 mM.
Disodium (R)-2-Hydroxyglutarate ROS activator Chemical Structure

화학 구조

분자량: 192.08

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품질 관리 (Quality Control)

배치: 순도: 99.74%
99.74

화학 정보, 보관 및 안정성 (Chemical Information, Storage & Stability)

분자량 192.08 화학식

C5H6Na2O5

 보관 (수령일로부터)
CAS 번호 103404-90-6 SDF 다운로드 원액 보관

동의어 D-α-Hydroxyglutaric acid disodium Smiles C(CC(=O)[O-])C(C(=O)[O-])O.[Na+].[Na+]

용해도 (Solubility)

In vitro
배치:

Water : 38 mg/mL

DMSO : Insoluble
(수분으로 오염된 DMSO는 용해도를 감소시킬 수 있습니다. 신선하고 무수 DMSO를 사용하십시오.)

Ethanol : Insoluble

몰농도 계산기

질량 농도 부피 분자량
희석 계산기 분자량 계산기

In vivo
배치:

생체 내 제형 계산기 (투명한 용액)

1단계: 아래 정보 입력 (권장: 실험 중 손실을 고려하여 추가 동물 포함)

mg/kg g μL

2단계: 생체 내 제형 입력 (이것은 계산기일 뿐 제형이 아닙니다. 용해도 섹션에 생체 내 제형이 없는 경우 먼저 당사에 문의하십시오.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

계산 결과:

작업 농도: mg/ml;

DMSO 원액 준비 방법: mg 약물 사전 용해 μL DMSO ( 원액 농도 mg/mL, 농도가 해당 약물 배치의 DMSO 용해도를 초과하는 경우 먼저 당사에 문의하십시오. )

생체 내 제형 준비 방법: 취하다 μL DMSO 원액, 다음 추가μL PEG300, 혼합하고 투명하게 한 다음 추가μL Tween 80, 혼합하고 투명하게 한 다음 추가 μL ddH2O, 혼합하고 투명하게 합니다.

생체 내 제형 준비 방법: 취하다 μL DMSO 원액, 다음 추가 μL 옥수수 기름, 혼합하고 투명하게 합니다.

참고: 1. 다음 용매를 추가하기 전에 액체가 투명한지 확인하십시오.
2. 용매를 순서대로 추가해야 합니다. 다음 용매를 추가하기 전에 이전 추가에서 얻은 용액이 투명한 용액인지 확인해야 합니다. 와동, 초음파 또는 뜨거운 물 중탕과 같은 물리적 방법을 사용하여 용해를 도울 수 있습니다.

작용 메커니즘 (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
α-ketoglutarate-dependent dioxygenase
시험관 내(In vitro)
In U-87MG cells, (R)-2-Hydroxyglutarate acts as weak antagonists of α-KG to inhibit α-KG-dependent histone demethylases and increases dimethylation on both H3K9 and H3K79. Besides, (R)-2-Hydroxyglutarate inhibits ATP synthase and mTOR signaling, and thus causes growth arrest and tumor cell killing.
키나아제 분석
Enzymatic Assays
To assay human JHDM1A/KDM2A demethylase activity toward H3K36me2, His tagged JHDM1A is first obtained by transforming pET28a-JHDM1A into Escherichia coli BL21 and protein expression is induced by addition of 1 mM IPTG at 30° C when cell density reaches 0.5 OD600 units. Cells are lysed by sonication and Ni-NTA agarose is used to purify His-JHDM1A fusion proteins. Histone demethylase assay is carried out by incubating 2 μg oligonucleosomes, 4 μg purified His-JHDM1A, and/or 10–50 mM L- or D-2-HG in histone demethylation buffer [50 mM HEPES (pH 8.0), 625 μM Fe(NH4)2(SO4)2, 0.1–0.5 mM α-KG, 2 mM ascorbate] at 37° C for 2–3 hr and the reactions are stopped by the addition of SDS loading buffer and subsequently analyzed by western blotting using anti-H3K36me2 antibody. To measure CeKDM7A demethylase activity toward H3K9me2 and H3K27me2, two synthetic dimethylated peptides H3K9me2 [ARTKQTARK (me2)STGGKA] and H3K27me2 [QLATKAARK (me2)SAPAS] are used as substrates. Demethylase assays are carried out in the presence of 10 μg enzyme, 1 μg peptide in 20 μl buffer 20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 150 mM NaCl, 50 μM Fe(NH4)2(SO4)22, 100 μM α-KG, 2 mM Vc, 10 mM PMSF for 3 hr. The demethylation reaction mixture is desalted by passing through a C18 ZipTip. To examine the inhibitory effect of 2-HG, various concentrations of 2-HG are incubated with KDM7A briefly before adding other reaction mixtures. The samples are analyzed by a MALDI-TOF/TOF mass spectrometer.
참조