데이터시트

생물학적 설명

특이성	CA19-9 Antibody [C17A13]는 CA 19-9 단백질의 내인성 수준을 감지합니다.
배경	CA19-9(탄수화물 항원 19-9)는 Sialyl Lewis A(sLeᵃ)라고도 불리며, 시알산, 갈락토스, N-아세틸글루코사민, 푸코스로 구성된 시알화된 Lewis 혈액형 항원인 테트라사카라이드 글리칸 에피토프로, Lewis 혈액형 경로를 통해 생합성되며 그 형성을 위해 기능적인 Lewis 항원을 필요로 합니다. CA19-9는 상피세포막의 당단백질과 당지질, 특히 췌장, 담도, 위, 결장에서 발현되며 혈류로 배출될 수 있습니다. 이는 췌장 선암종에 대한 현재의 골드 표준 혈청 바이오마커입니다. 기능적으로 CA19-9는 바이오마커(진단, 예후, 치료 반응 모니터링 및 재발 감지용), 예측인자(종양 부담, 병기 및 절제 가능성과 상관관계) 및 E-셀렉틴 매개 접착 촉진, 혈관 신생 강화, 면역 반응 조절 및 종양 미세 환경 상호 작용에 영향을 미침으로써 암 진행 촉진제로 작용합니다. 췌장암 외에도 CA19-9는 다른 위장관 악성 종양 및 특정 양성 질환에서 상승하며, 항체, 백신, 생합성 억제제 및 CA19-9 유도 약물 전달 시스템을 통한 치료 표적으로 조사되고 있습니다.

특이성

CA19-9 Antibody [C17A13]는 CA 19-9 단백질의 내인성 수준을 감지합니다.

배경

CA19-9(탄수화물 항원 19-9)는 Sialyl Lewis A(sLeᵃ)라고도 불리며, 시알산, 갈락토스, N-아세틸글루코사민, 푸코스로 구성된 시알화된 Lewis 혈액형 항원인 테트라사카라이드 글리칸 에피토프로, Lewis 혈액형 경로를 통해 생합성되며 그 형성을 위해 기능적인 Lewis 항원을 필요로 합니다. CA19-9는 상피세포막의 당단백질과 당지질, 특히 췌장, 담도, 위, 결장에서 발현되며 혈류로 배출될 수 있습니다. 이는 췌장 선암종에 대한 현재의 골드 표준 혈청 바이오마커입니다. 기능적으로 CA19-9는 바이오마커(진단, 예후, 치료 반응 모니터링 및 재발 감지용), 예측인자(종양 부담, 병기 및 절제 가능성과 상관관계) 및 E-셀렉틴 매개 접착 촉진, 혈관 신생 강화, 면역 반응 조절 및 종양 미세 환경 상호 작용에 영향을 미침으로써 암 진행 촉진제로 작용합니다. 췌장암 외에도 CA19-9는 다른 위장관 악성 종양 및 특정 양성 질환에서 상승하며, 항체, 백신, 생합성 억제제 및 CA19-9 유도 약물 전달 시스템을 통한 치료 표적으로 조사되고 있습니다.

사용 정보

응용

IHC, FCM, ELISA

희석

IHC

1:100

반응성

Human

출처

Mouse Monoclonal Antibody

MW

보관 완충액

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

보관
(수령일로부터)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

실험 방법
IHC	Experimental Protocol： Deparaffinization/Rehydration 1. Deparaffinize/hydrate sections: 2. Incubate sections in three washes of xylene for 5 min each. 3. Incubate sections in two washes of 100% ethanol for 10 min each. 4. Incubate sections in two washes of 95% ethanol for 10 min each. 5. Wash sections two times in dH2O for 5 min each. 6.Antigen retrieval: For Citrate: Heat slides in a microwave submersed in 1X citrate unmasking solution until boiling is initiated; continue with 10 min at a sub-boiling temperature (95°-98°C). Cool slides on bench top for 30 min. Staining 1. Wash sections in dH2O three times for 5 min each. 2. Incubate sections in 3% hydrogen peroxide for 10 min. 3. Wash sections in dH2O two times for 5 min each. 4. Wash sections in wash buffer for 5 min. 5. Block each section with 100–400 µl of blocking solution for 1 hr at room temperature. 6. Remove blocking solution and add 100–400 µl primary antibody diluent in to each section. Incubate overnight at 4°C. 7. Remove antibody solution and wash sections with wash buffer three times for 5 min each. 8. Cover section with 1–3 drops HRPas needed. Incubate in a humidified chamber for 30 min at room temperature. 9. Wash sections three times with wash buffer for 5 min each. 10. Add DAB Chromogen Concentrate to DAB Diluent and mix well before use. 11. Apply 100–400 µl DAB to each section and monitor closely. 1–10 min generally provides an acceptable staining intensity. 12. Immerse slides in dH2O. 13. If desired, counterstain sections with hematoxylin. 14. Wash sections in dH2O two times for 5 min each. 15. Dehydrate sections: Incubate sections in 95% ethanol two times for 10 sec each; Repeat in 100% ethanol, incubating sections two times for 10 sec each; Repeat in xylene, incubating sections two times for 10 sec each. 16. Mount sections with coverslips and mounting medium.

실험 방법

IHC

Experimental Protocol：

Deparaffinization/Rehydration

1. Deparaffinize/hydrate sections:

2. Incubate sections in three washes of xylene for 5 min each.

3. Incubate sections in two washes of 100% ethanol for 10 min each.

4. Incubate sections in two washes of 95% ethanol for 10 min each.

5. Wash sections two times in dH2O for 5 min each.

6.Antigen retrieval: For Citrate: Heat slides in a microwave submersed in 1X citrate unmasking solution until boiling is initiated; continue with 10 min at a sub-boiling temperature (95°-98°C). Cool slides on bench top for 30 min.

Staining

1. Wash sections in dH2O three times for 5 min each.

2. Incubate sections in 3% hydrogen peroxide for 10 min.

3. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.

4. Wash sections in wash buffer for 5 min.

5. Block each section with 100–400 µl of blocking solution for 1 hr at room temperature.

6. Remove blocking solution and add 100–400 µl primary antibody diluent in to each section. Incubate overnight at 4°C.

7. Remove antibody solution and wash sections with wash buffer three times for 5 min each.

8. Cover section with 1–3 drops HRPas needed. Incubate in a humidified chamber for 30 min at room temperature.

9. Wash sections three times with wash buffer for 5 min each.

10. Add DAB Chromogen Concentrate to DAB Diluent and mix well before use.

11. Apply 100–400 µl DAB to each section and monitor closely. 1–10 min generally provides an acceptable staining intensity.

12. Immerse slides in dH2O.

13. If desired, counterstain sections with hematoxylin.

14. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.

15. Dehydrate sections: Incubate sections in 95% ethanol two times for 10 sec each; Repeat in 100% ethanol, incubating sections two times for 10 sec each; Repeat in xylene, incubating sections two times for 10 sec each.

16. Mount sections with coverslips and mounting medium.

참조

https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32827580/
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30814526/

적용 데이터

IHC

Selleck 검증

Immunohistochemical analysis of formalin fixed paraffin embedded human colorectal cancer tissue with F2466 at 1:100 dilution.