데이터시트

생물학적 설명

특이성	TGF β Receptor II Antibody [J15L22]는 총 TGF-β Receptor II 단백질의 내인성 수준을 검출합니다.
배경	TGF β Receptor II (형질전환 성장 인자-β 유형 II 수용체, TβRII)는 유형 I 막관통 당단백질이며, TGF-β 신호 전달을 시작하는 구성적으로 활성인 세린/트레오닌 키나아제입니다. 이는 6개의 이황화 결합(유형 II 수용체 중 4개는 보존되고 TβRII에만 고유한 2개)으로 안정화된 3-손가락 독소 접힘을 가진 세포외 리간드 결합 엑토도메인, 단일 막관통 세그먼트, 그리고 세포내 키나아제 도메인으로 구성됩니다. 엑토도메인은 12개의 시스테인을 포함하고 관련 수용체에 비해 확장된 첫 번째 “손가락”을 특징으로 하며, 이는 특정 리간드 상호작용을 가능하게 합니다. TβRII는 많은 조직에서 발현되며 TGF-β 리간드에 결합하여 유형 I 수용체(TβRI)를 모집하고 인산화하여 Src 키나아제 신호 전달을 포함한 SMAD-의존적 및 SMAD-비의존적 경로를 활성화합니다. 이러한 메커니즘을 통해 TβRII는 발달, 조직 항상성, 면역 반응 및 암과 섬유증과 같은 병리학적 과정을 조절합니다.

특이성

TGF β Receptor II Antibody [J15L22]는 총 TGF-β Receptor II 단백질의 내인성 수준을 검출합니다.

배경

TGF β Receptor II (형질전환 성장 인자-β 유형 II 수용체, TβRII)는 유형 I 막관통 당단백질이며, TGF-β 신호 전달을 시작하는 구성적으로 활성인 세린/트레오닌 키나아제입니다. 이는 6개의 이황화 결합(유형 II 수용체 중 4개는 보존되고 TβRII에만 고유한 2개)으로 안정화된 3-손가락 독소 접힘을 가진 세포외 리간드 결합 엑토도메인, 단일 막관통 세그먼트, 그리고 세포내 키나아제 도메인으로 구성됩니다. 엑토도메인은 12개의 시스테인을 포함하고 관련 수용체에 비해 확장된 첫 번째 “손가락”을 특징으로 하며, 이는 특정 리간드 상호작용을 가능하게 합니다. TβRII는 많은 조직에서 발현되며 TGF-β 리간드에 결합하여 유형 I 수용체(TβRI)를 모집하고 인산화하여 Src 키나아제 신호 전달을 포함한 SMAD-의존적 및 SMAD-비의존적 경로를 활성화합니다. 이러한 메커니즘을 통해 TβRII는 발달, 조직 항상성, 면역 반응 및 암과 섬유증과 같은 병리학적 과정을 조절합니다.

사용 정보

응용

IHC, FCM

희석

IHC

1:50 - 1:200

반응성

Human

출처

Mouse Monoclonal Antibody

MW

보관 완충액

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

보관
(수령일로부터)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

실험 방법
IHC	Experimental Protocol： Deparaffinization/Rehydration 1. Deparaffinize/hydrate sections: 2. Incubate sections in three washes of xylene for 5 min each. 3. Incubate sections in two washes of 100% ethanol for 10 min each. 4. Incubate sections in two washes of 95% ethanol for 10 min each. 5. Wash sections two times in dH2O for 5 min each. 6.Antigen retrieval: For Citrate: Heat slides in a microwave submersed in 1X citrate unmasking solution until boiling is initiated; continue with 10 min at a sub-boiling temperature (95°-98°C). Cool slides on bench top for 30 min. Staining 1. Wash sections in dH2O three times for 5 min each. 2. Incubate sections in 3% hydrogen peroxide for 10 min. 3. Wash sections in dH2O two times for 5 min each. 4. Wash sections in wash buffer for 5 min. 5. Block each section with 100–400 µl of blocking solution for 1 hr at room temperature. 6. Remove blocking solution and add 100–400 µl primary antibody diluent in to each section. Incubate overnight at 4°C. 7. Remove antibody solution and wash sections with wash buffer three times for 5 min each. 8. Cover section with 1–3 drops HRPas needed. Incubate in a humidified chamber for 30 min at room temperature. 9. Wash sections three times with wash buffer for 5 min each. 10. Add DAB Chromogen Concentrate to DAB Diluent and mix well before use. 11. Apply 100–400 µl DAB to each section and monitor closely. 1–10 min generally provides an acceptable staining intensity. 12. Immerse slides in dH2O. 13. If desired, counterstain sections with hematoxylin. 14. Wash sections in dH2O two times for 5 min each. 15. Dehydrate sections: Incubate sections in 95% ethanol two times for 10 sec each; Repeat in 100% ethanol, incubating sections two times for 10 sec each; Repeat in xylene, incubating sections two times for 10 sec each. 16. Mount sections with coverslips and mounting medium.

실험 방법

IHC

Experimental Protocol：

Deparaffinization/Rehydration

1. Deparaffinize/hydrate sections:

2. Incubate sections in three washes of xylene for 5 min each.

3. Incubate sections in two washes of 100% ethanol for 10 min each.

4. Incubate sections in two washes of 95% ethanol for 10 min each.

5. Wash sections two times in dH2O for 5 min each.

6.Antigen retrieval: For Citrate: Heat slides in a microwave submersed in 1X citrate unmasking solution until boiling is initiated; continue with 10 min at a sub-boiling temperature (95°-98°C). Cool slides on bench top for 30 min.

Staining

1. Wash sections in dH2O three times for 5 min each.

2. Incubate sections in 3% hydrogen peroxide for 10 min.

3. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.

4. Wash sections in wash buffer for 5 min.

5. Block each section with 100–400 µl of blocking solution for 1 hr at room temperature.

6. Remove blocking solution and add 100–400 µl primary antibody diluent in to each section. Incubate overnight at 4°C.

7. Remove antibody solution and wash sections with wash buffer three times for 5 min each.

8. Cover section with 1–3 drops HRPas needed. Incubate in a humidified chamber for 30 min at room temperature.

9. Wash sections three times with wash buffer for 5 min each.

10. Add DAB Chromogen Concentrate to DAB Diluent and mix well before use.

11. Apply 100–400 µl DAB to each section and monitor closely. 1–10 min generally provides an acceptable staining intensity.

12. Immerse slides in dH2O.

13. If desired, counterstain sections with hematoxylin.

14. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.

15. Dehydrate sections: Incubate sections in 95% ethanol two times for 10 sec each; Repeat in 100% ethanol, incubating sections two times for 10 sec each; Repeat in xylene, incubating sections two times for 10 sec each.

16. Mount sections with coverslips and mounting medium.

참조

https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12121646/
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36378749/

적용 데이터

IHC

Selleck 검증

Immunohistochemical analysis of formalin fixed paraffin embedded human placenta tissue with F2400 at 1:50 dilution.