연구용

Anti-DYKDDDDK Tag magnetic beads

Anti-DYKDDDDK Tag 자기 비드는 고품질 재조합 마우스 단일클론 항체와 공유 결합된 하이드록실 자기 비드를 기반으로 합니다. DYKDDDDK-태그 단백질의 높은 로딩(0.6 mg 단백질/mL 이상)과 높은 특이성을 가지고 있어 공동 면역침강 및 단백질 정제에 사용하는 것이 좋습니다.

Anti-DYKDDDDK Tag Affinity Gel

Sellecks 인용됨 119 출판물

장점

시간 절약: 아가로스 비드에 비해 15-30분 절약.

간단한 조작: 자기 분리 및 원심분리 불필요.

높은 단백질 로딩 용량.

높은 특이성.

제품 비교

설명

Anti-DYKDDDDK Tag 자기 비드는 고품질 재조합 마우스 단일클론 항체와 공유 결합된 하이드록실 자기 비드를 기반으로 합니다. DYKDDDDK-태그 단백질의 높은 로딩(0.6 mg 단백질/mL 이상)과 높은 특이성을 가지고 있어 공동 면역침강 및 단백질 정제에 사용하는 것이 좋습니다.

특성

항체 동형 재조합 마우스 단일클론 항체
항체 정제 Protein A 정제
응용 면역침강 및 단백질 정제
권장량 IP: 200 μl 조단백질 용액에 20 μl 비드
결합 용량 자기 비드 1 ml당 최소 0.6 mg 단백질 용출
결합 특성 Met-N-말단 DYKDDDDK Tag 융합 단백질: Met-DYKDDDDK Tag–단백질
N-말단 DYKDDDDK Tag 융합 단백질: DYKDDDDK Tag–단백질
C-말단 DYKDDDDK Tag 융합 단백질: 단백질-DYKDDDDK Tag

보관 (수령일로부터)

2-8°C에서 2년 동안 보관하십시오.

프로토콜

Protocol of Selleck Anti-flag magnetic beads

자기 비드 준비
1. 바이알에 있는 Anti-DYKDDDDK Tag 자기 비드를 현탁시킵니다 (10회 부드럽게 피펫팅하고, 볼텍싱하지 마십시오). 10 µL (필요에 따라 양을 조절할 수 있음)의 Anti-DYKDDDDK Tag 자기 비드 현탁액을 새 튜브로 옮깁니다.
2. 0.5 mL TBS 버퍼 (50 mM Tris HCl, 150 mM NaCl, pH 7.4)를 추가합니다. Anti-DYKDDDDK Tag 자기 비드를 5회 부드럽게 피펫팅합니다. 비드를 용액에서 분리하기 위해 1-2분 동안 (적절하게 5분까지 연장 가능) 튜브를 자석 위에 놓고 상층액을 제거합니다. 이 단계를 2회 반복합니다.
참고: 샘플이 배치 처리되는 경우 모든 자기 비드를 하나의 큰 튜브에 함께 준비한 다음 분할하십시오. 상층액을 제거할 때 너무 세게 흡입하면 일부 자기 비드가 손실될 수 있으므로 부드럽게 흡입하십시오.
단백질 결합
3. 세척된 자기 비드에 세포 용해물 500 µL를 추가합니다. 튜브를 실온에서 2시간 또는 4°C에서 밤새도록 부드럽게 회전시킵니다.
4. 비드를 용액에서 분리하기 위해 1-2분 동안 (적절하게 연장 가능) 튜브를 자석 위에 놓고, DYKDDDDK-태그 단백질 잔류 여부를 감지하기 위해 상층액을 새 튜브로 옮깁니다.
참고: 결합 과정에서 자기 비드가 가끔 뭉치더라도 결과에는 영향을 미치지 않습니다.
자기 세척
5. 튜브에 500 µL PBST를 추가합니다 (NaCl 136.89 mM; KCl 2.67 mM; Na2HPO4 8.1 mM; KH2PO4 1.76 mM; 0.5% Tween20), 부드럽게 피펫팅하여 자기 비드를 재현탁시킵니다. 그런 다음 튜브를 5분 동안 회전시킵니다. 튜브를 자석 위에 놓고 10초 동안 비드를 용액에서 분리하고 상층액을 제거합니다.
6. 5단계를 약 2회 반복합니다. 비특이적 불순물 단백질이 남아있는 경우, 세척 시간을 연장하거나, 세척 횟수를 늘리거나, 세척액 내 세제 함량을 적절히 늘리십시오.
용출 및 검출
하위 사용에 따라 다른 용출 방법을 선택하십시오. IP의 경우 7-8단계로 이동하십시오. 단백질 정제의 경우 저pH 용출을 위해 9-10단계로 이동하십시오.
변성 용출 (Anti-DYKDDDDK Tag 비드를 사용하는 IP 실험에 적합):
7. 표적 단백질의 직접 검출을 위해 위에서 언급된 침전물에 50 µL의 1×단백질 샘플 로딩 버퍼를 추가하고, 5분 동안 끓이고, 실온으로 식힌 다음 튜브를 자석 위에 놓고 비드를 용액에서 1-2분 동안 분리합니다 (적절하게 연장 가능).
8. SDS-PAGE로 상층액을 검출합니다.
경쟁적 폴리 DYKDDDDK Tag 폴리펩타이드 용출 (Anti-DYKDDDDK Tag 비드를 사용한 단백질 정제에 적합):
9. 6단계의 제품에 200 µg-1 mg/mL Poly DYKDDDDK Tag Peptide (B23111)가 포함된 TBS 버퍼를 추가하고, 쉐이커 (4°C)에서 2시간 동안 배양합니다. 일반적으로 Poly DYKDDDDK Tag Peptide의 부피는 젤의 5배입니다.
10. 위 단계의 제품을 자기 분리 장치에 놓고 자기 분리를 수행합니다. 표적 단백질을 포함하는 상층액을 새 EP 튜브로 옮깁니다. 자기 비드를 재사용해야 하는 경우, 0.1 M 글리신 HCl (pH 3.0)로 젤을 세척하고 재활용을 수행하십시오.
저pH 용출 (Anti-DYKDDDDK Tag 비드를 사용한 단백질 정제에 적합):
11. 6단계의 제품에 0.1 M 글리신 HCl (pH 3.0) 용출 버퍼를 추가하고, 쉐이커에서 5분 동안 배양합니다 (용출 시간은 20분 미만이어야 합니다). 일반적으로 용출 버퍼의 부피는 젤의 5배입니다.
12. 위 단계에서 얻은 제품을 5000 rpm에서 30초 동안 원심분리합니다. 그런 다음 용출 제품을 1 M Tris (pH 8.0)로 신속하게 옮겨 pH가 중성에 가까워질 때까지 중화시킵니다.

문제 해결

문제 가능한 원인 제안된 개선 사항
높은 배경 항체, 자기 비드 또는 EP 튜브에 단백질이 비특이적으로 결합 비특이적 결합 단백질을 제거하기 위해 용해물을 사전 정제합니다.
최종 세척을 위해 비드를 현탁시킨 후, 전체 샘플을 깨끗한 EP 튜브로 옮긴 다음 자기 분리를 수행합니다.
세척 시간이 충분하지 않습니다. 세척 횟수를 늘립니다.
세척 시간을 늘립니다.
신호가 관찰되지 않습니다. DYKDDDDK-태그 단백질이 샘플에서 발현되지 않습니다. 관심 단백질에 DYKDDDDK Tag 서열이 포함되어 있는지 확인합니다.
신선한 용해물을 준비합니다.
적절한 프로테아제 억제제를 사용합니다.
배양 시간이 부적절합니다. 배양 시간을 늘립니다.
샘플에 방해 물질이 존재합니다. 용해물에 고농도의 디티오트레이톨 (DTT), 2-메르캅토에탄올 또는 기타 환원제가 포함될 수 있습니다.
과도한 세제 농도는 항체-항원 상호작용을 방해할 수 있습니다.

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