연구용

Hoechst 33342 Dyes chemical

제품 번호: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) is a membrane-permeant fluorescent stain that can stain live cells. This compound binds to adenine-thymine-rich regions of DNA in the minor groove and greatly increases the fluorescence. It allows easy visualization of the nucleus in interphase cells and chromosomes in mitotic cells.
Hoechst 33342 Dyes chemical Chemical Structure

화학 구조

분자량: 452.55

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품질 관리 (Quality Control)

배치: 순도: 99.94%
99.94

화학 정보, 보관 및 안정성 (Chemical Information, Storage & Stability)

분자량 452.55 화학식

C27H28N6O

보관 (수령일로부터) 3 years -20°C powder
CAS 번호 23491-52-3 -- 원액 보관

동의어 Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

용해도 (Solubility)

In vitro
배치:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(수분으로 오염된 DMSO는 용해도를 감소시킬 수 있습니다. 신선하고 무수 DMSO를 사용하십시오.)

Ethanol : Insoluble

몰농도 계산기

질량 농도 부피 분자량
희석 계산기 분자량 계산기

In vivo
배치:

생체 내 제형 계산기 (투명한 용액)

1단계: 아래 정보 입력 (권장: 실험 중 손실을 고려하여 추가 동물 포함)

mg/kg g μL

2단계: 생체 내 제형 입력 (이것은 계산기일 뿐 제형이 아닙니다. 용해도 섹션에 생체 내 제형이 없는 경우 먼저 당사에 문의하십시오.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

계산 결과:

작업 농도: mg/ml;

DMSO 원액 준비 방법: mg 약물 사전 용해 μL DMSO ( 원액 농도 mg/mL, 농도가 해당 약물 배치의 DMSO 용해도를 초과하는 경우 먼저 당사에 문의하십시오. )

생체 내 제형 준비 방법: 취하다 μL DMSO 원액, 다음 추가μL PEG300, 혼합하고 투명하게 한 다음 추가μL Tween 80, 혼합하고 투명하게 한 다음 추가 μL ddH2O, 혼합하고 투명하게 합니다.

생체 내 제형 준비 방법: 취하다 μL DMSO 원액, 다음 추가 μL 옥수수 기름, 혼합하고 투명하게 합니다.

참고: 1. 다음 용매를 추가하기 전에 액체가 투명한지 확인하십시오.
2. 용매를 순서대로 추가해야 합니다. 다음 용매를 추가하기 전에 이전 추가에서 얻은 용액이 투명한 용액인지 확인해야 합니다. 와동, 초음파 또는 뜨거운 물 중탕과 같은 물리적 방법을 사용하여 용해를 도울 수 있습니다.

작용 메커니즘 (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
시험관 내(In vitro)

1.1 Preparation of the stock solution
Dissolve 10 mg of Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Note: It is recommended to store the stock solution at 4℃ or -20℃ away from light and avoid repetitive freeze-thaw cycles.
1.2 Preparation of this compound working solution
Dilute the stock solution in serum-free cell culture medium or PBS to obtain final concentration 10 μg/mL this chemical working solution.
Note: Please adjust the concentration of this reagent working solution according to the actual situation.
1.Cell staining
2.1 Suspension cells(6-well plate)
a. Centrifuge at 1000 g at 4℃ for 3-5 minutes and then discard the supernatant. Wash twice with PBS, 5 minutes each time. The cell density is 1×106/mL.
b. Add 1 mL of working solution, and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
c. Centrifuge at 400 g at 4℃ for 3-4 minutes and then discard the supernatant.
d. Wash twice with PBS, 5 minutes each time.
e. Resuspend cells with serum-free cell culture medium or PBS. Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.
2.2 Adherent cells
a. Culture adherent cells on sterile coverslips.
b. Remove the coverslip from the medium and aspirate excess medium.
c. Add 100 μL of working solution, gently shake it to completely cover the cells,and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
d. Wash twice with medium, 5 minutes each time.Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.

참조